Лекция 12. Стерильные лекарственные формы.
Инъекционные растворы без стабилизаторов и со стабилизаторами
Лекарственные формы для инъекций особая группа ЛФ,
вводимых в организм при помощи шприца с нарушением целостности кожных покровов
или слизистых оболочек.
К данной группе относятся:
- водные и масляные растворы;
- суспензии и эмульсии;
- стерильные порошки и таблетки, растворяемые в
стерильном растворителе перед введением.
Преимуществами инъекционного способа введения ЛВ
являются:
1.
Быстрота
действия вводимых ЛВ;
2.
Отсутствие
разрушительного действия ферментов ЖКТ и печени на ЛВ;
3.
Полное
всасывание вводимых ЛВ;
4.
Точность
дозирования;
5.
Возможность
введения ЛФ больному, находящемуся в бессознательном состоянии;
6.
Замена крови
после значительных ее потерь;
7.
Возможность
заготовки СЛФ впрок.
К недостаткам относятся:
1.
Возможность
побочных явлений и осложнений;
2.
Возможность
внесения инфекции, посторонних частиц и пирогенных веществ;
3.
Болезненность
(особенно в детской практике);
4.
Инъекции может
производить только медицинский персонал;
5.
Возможность
эмболии – закупорки мелких сосудов.
Абсолютная биодоступность ЛВ при их
внутривенном введении объясняется тем, что ЛВ поступают немедленно и полно в
большой круг кровообращения, проявляя при этом максимально возможный лечебный
эффект.
Важнейшие требования, предъявляемые к инъекционным
растворам:
1.
Соблюдение
правил асептики при их изготовлении;
2.
Отсутствие
механических примесей;
3.
Стерильность;
4.
Стойкость;
5.
Апирогенность;
6.
В соответствии
со статьей ГФ – изотоничность.
Стерилизация – полное
уничтожение в том или ином объекте живых микроорганизмов и их спор. Она, т.е стерильность, обеспечивается
соблюдением правил асептики, а также стерилизацией инъекционных растворов.
Стерилизация осуществляется следующими методами:
-физическими;
-химическими;
-механическими.
К физическим методам относится воздействие
высоких температур на стерилизуемые объекты (тепловая стерилизация),
воздействие УФ излучением, токами высокой частоты, ультразвуковыми колебаниями,
ИК лучами и т.д.
В аптечной практике для стерилизации посуды и лекарств
пользуются тепловыми методами стерилизации.
Паровой метод стерилизации
осуществляют насыщенным водяным паром при избыточном давлении. Автоклавирование – основной метод термической стерилизации
и проводится в аппарате, который называется паровым стерилизатором
(автоклавом). Для растворов ЛВ рекомендуют стерилизацию паром при температуре
1200.
Объем образца |
Время стерилизуемой выдержки |
до 100 мл |
8 мин |
101 – 500 |
12 мин |
501 – 1000 |
15 мин |
Жиры и масла стерилизуют в герметично укупоренных
сосудах при 1200 – 2 часа.
Изделия из стекла, фарфора, металлов, ВВ и
перевязочные материалы: 1200 – 45 мин, либо при 1320 – 20
мин.
Использование высоких температур при стерилизации
основано на необратимой коагуляции протоплазмы, пирогенетическом ее разрушении
и на повреждении ферментных систем микробной клетки.
Нагревание горячим воздухом до той же температуры, что и влажным паром, гораздо слабее влияет на
микроорганизмы и в то же время оказывает разрушающее действие на многие
материалы (бумага, резина…). Этот метод стерилизации осуществляется сухим
горячим воздухом в воздушных стерилизаторах при температуре 160, 180 и 2000,
при этом погибают все формы
микроорганизмов за счет пирогенетического разложения белковых веществ.
Для стерилизации этим методом пригодны стерилизационные камеры и сушильные
шкафы с электрообогревом.
Химические методы стерилизации основаны на специфической чувствительности микроорганизмов к
различным химическим веществам, называемым антимикробными веществами. Основным
требованием, предъявляемым к ним, является полная безвредность для организма
человека. Химическую стерилизацию, как и механическую, применяют для
обеспложивания растворов, содержащих термолабильные вещества.
Химические методы подразделяются на газовый метод
стерилизации и стерилизацию растворами. Газовая
стерилизация основана на применении летучих дезинфицирующих веществ, легко
удаляемых из стерилизуемого объекта путем слабого нагревания или вакуума. С
этой целью используют окись этилена и ее смесь с углекислым газом, фреонами и
т.д. Их антимикробное действие основано на гидролизе, которому указанные газы
подвергаются в растворе, в результате чего образуются соединения,
воздействующие на микроорганизмы. Химическая стерилизация растворами осуществляется с помощью перекиси водорода
и надкислот. Эффективность данного метода зависит от
концентрации активно действующего вещества, времени стерилизационной выдержки и
температуры стерилизующего раствора.
Механическая стерилизация (стерилизация фильтрованием) в последнее время
находит широкое применение, так как иногда данный метод является единственно
возможным, если ЛВ в растворе подвергается деструкции при термической
стерилизации. Стерилизацию фильтрованием используют и в случаях механического
удаления загрязнений, когда термическая стерилизация не исключена. Различают
мембранные и глубинные фильтры, которые обладают различным механизмом
фильтрования. Глубинные фильтры – это
обычные тканевые или ватно-марлевые фильтры, фильтры из спеченных частичек
стекла или металла, многослойные бумажные и т.д. Структура этих фильтров
неоднородна, задержание частиц происходит по всей толщине фильтра. В аптеке
чаще всего используют стеклянные фильтры, в которых фильтрование проводится под
разряжением. Мембранные фильтры
представляют собой тонкие (100 – 150 мкм) пленки из пластических масс
(например: эфиров лавсана, капрона). Эти фильтры содержат сравнительно меньшее
число пор определенных размеров и характеризуются ситовым удержанием частиц. В
этом важную роль играет капиллярный эффект и явление адсорбции.
Асептика – это
определенный режим работы, комплекс организационных мероприятий, позволяющий
свести к минимуму возможность попадания микроорганизмов в ЛФ, приготавливаемую
из стерильных материалов. Соблюдение правил асептики обязательно при
изготовлении всех инъекционных и глазных ЛФ. Стерилизация ЛФ, приготовленной
без соблюдения правил асептики и загрязненного вследствие этого микрофлорой, не
освобождает его ни от тел погибших микроорганизмов, ни от воздействия
выделенных ими токсинов, что может привести в
разнообразным побочным явлениям. Соблюдение асептики особенно важно при
изготовлении лекарств термолабильных веществ. В этом случае (по ГФ Х), асептика
достигается тем, что растворитель или основу для мази, инструменты и посуду
стерилизуют отдельно, а термолабильные вещества асептически
взвешивают и растворяют в стерильном растворителе или смешивают со стерильной
основой стерильными инструментами и помещают в стерильную посуду.
Изготавливают лекарства в специальном блоке, состоящем
из 3 помещений: асептической, предасептической
(тамбур) и аппаратной. В асептической комнате производят непосредственное
приготовление ЛФ; в аппаратной размещается тепло- и паровыделяющая аппаратура. Асептическая и аппаратная
комнаты соединяются через тамбур, который используется для подготовки
работников аптеки к работе. В нем обрабатывают руки, надевают стерильную
одежду и респиратор. Основным
требованием к одежде работников асептического блока является стерильность с
ежедневной заменой перед началом работы. Комплект одежды стерилизуют в биксах,
в паровых стерилизаторах при 1200 – 45 мин. и хранят в закрытом
биксе не более 3 суток.
Стабильностью (стойкостью)
растворов называется неизменность свойств содержащихся в них ЛВ. Достигается
она:
- строгим соблюдением условий асептики;
- подбором оптимальной температуры стерилизации;
- подбором оптимального времени стерилизационной
выдержки;
- использованием соответствующих природе ЛВ
стабилизаторов, консервантов и т.д.
ЛВ, водные
растворы которых требуют стабилизации, можно разделить
на 3 группы.
1.
Соли,
образованные сильными кислотами и слабыми основаниями (соли алкалоидов и
азотистых оснований) по ГФ Х стабилизируют прибавлением 0,1м раствора соляной
кислоты. Водные растворы таких солей вследствие гидролиза имеют нейтральную или
слабокислую реакцию, и прибавление кислоты подавляет гидролиз.
2.
Соли,
образованные сильными основаниями и слабыми кислотами стабилизируют прибавлением
щелочи или гидрокарбоната натрия. В данном случае соли диссоциируют
с образованием слабодиссоциирующей кислоты, что ведет
к уменьшению свободных ионов водорода и, следовательно, к увеличению рН
раствора. Для подавления гидролиза и прибавляется щелочь.
3.
Легкоокисляющиеся
вещества (кислота аскорбиновая, натрия салицилат, стрептоцид и др. вещества,
имеющие в своей молекуле спиртовые, фенольные, карбоксильные радикалы,
аминогруппы и др. функциональные группы с подвижным атомом водорода). Для
стабилизации этой группы веществ используют антиоксиданты – вещества,
обладающие большим окислительно – восстановительным
потенциалом, чем стабилизируемые ЛВ.
При стерилизации растворов глюкозы для инъекций,
особенно в щелочном стекле, происходят окисление, полимеризация и карамелизация глюкозы. Наблюдается пожелтение (побурение)
растворов. Для стабилизации растворов глюкозы используют стабилизатор,
предложенный Вейбелем и состоящий из смеси:
0,26 натрия хлорида
5 мл раствора соляной кислоты на 1л раствора глюкозы.
Для ускорения работы рекомендуется использовать
заранее приготовленный раствор стабилизатора, полученный по прописи:
5,2 натрия
хлорида
4,4мл
разведенной хлористоводородной кислоты (8,3%)
воды
дистиллированной до 1л.
Такого стабилизатора к раствору глюкозы прибавляют 5%
независимо от ее концентрации. Роль соляной кислоты заключается в нейтрализации
щелочности стекла и уменьшении вследствие этого опасности карамелизации
глюкозы. Натрия хлорид, по Вейбелю, образует
комплексное соединение по месту альдегидной группы и тем самым предупреждает окислительно - восстановительные процессы в растворе.
Апирогенностью называется отсутствие в инъекционном растворе
продуктов метаболизма микроорганизмов, так называемых пирогенных веществ рия.у на(пирогенов),
которые вызывают повышение температуры при попадании в организм. Так как пирогены с легкостью проходят сквозь фильтры, для их
полного разрушения необходимо автоклавирование при 1200 в течение нескольких
часов. В соответствии с требованиями ГФ Х инъекционные растворы не должны
содержать пирогенных веществ и для обеспечения этого требования их
изготавливают на апирогенной воде для инъекций.
Изотоничность.
Изотоническими называются растворы, осмотическое давление которых равно
осмотическому давлению жидкостей организма: плазмы крови, лимфы и т.д. В норме
давление этих жидкостей составляет примерно 7,4 атмосфер. При введении в
кровяное русло раствора с высоким осмотическим давлением (гипертонический
раствор), в результате разности осмотических давлений внутри эритроцитов и
окружающей их плазме начинается движение воды из эритроцитов, идущее до
выравнивания осмотических давлений. Эритроциты, лишаясь
части воды, сморщиваются (плазмолиз). При введении растворов с низким
осмотическим давлением (гипотонический раствор), жидкость пойдет внутрь
эритроцитов, они набухают и клеточная оболочка может
лопнуть (гемолиз), что очень опасно. Оба явления сопровождаются сильнейшими
болями и опасны для организма. Чтобы их избежать необходимо
проводить изотонирование растворов, т.е. рассчитывать
концентрацию раствора, создающую изотоническую концентрацию, соответствующую
плазме крови.
Расчет изотоничеких концентраций можно проводить 3 методами:
1.
На основании
газовых законов (исходя из законов Вант – Гоффа). Установлено, что для
приготовления изотонического раствора любого неэлектролита
необходимо взять 0,29 г/молекулы этого вещества на 1л раствора.
2.
Криоскопическим методом,
основанным на законе Рауля. Метод основан на понижении температуры замерзания
растворов по сравнению с температурой замерзания чистого растворителя.
3.
С использованием
изотонических эквивалентов по натрия хлориду –метод
является наиболее простым и удобным. Изотоническим эквивалентом по натрия хлориду называется
количество натрия хлорида, создающее в одинаковых условиях осмотическое
давление, равное осмотическому давлению 1г вещества. Расчет изотонической
концентрации производят по формуле:
Х = mлв × Э ×Vраствора
Если х < 0,9 раствор является гипотоническим; если
х ˃ 0,9, то гипертоническим.
Инъекционные
растворы без стабилизаторов и со стабилизаторами
Общая технология инъекционных растворов
Приготовление
инъекционных растворов складывается из следующих стадий:
1.
Расчет
количества воды и сухих ЛВ;
2.
Отмеривание
необходимого количества растворителя и отвешивание ЛВ;
3.
Подготовка
флакона и укупорочных средств;
4.
Растворение;
5.
Фильтрование;
6.
Оценка качества
инъекционных растворов;
7.
Стерилизация;
8.
Оформление к
отпуску;
9.
Повторная оценка
качества.
Готовят инъекционные растворы массо
– объемным методом; если отсутсвуют мерные колбы,
количество растворителя рассчитывают с использованием КУО или величины
плотности.
При изготовлении инъекционных растворов как
растворитель применяют воду для инъекций, жирные масла, как комплексный
растворитель – глицерин, пропиленгликоль, бензилбензоат, бензиловый спирт и
т.д. Для изготовления стерильных растворов чаще всего используют воду для
инъекций – aqua pro injectionibus, так как она является хорошим растворителем,
нейтральна, нетоксична, не вызывает аллергии и, в отличие от дистиллированной
воды, не содержит ни живых и ни мертвых микроорганизмов.
Воду для инъекций получают методами дистилляции и
обратного осмоса в дистилляторах, отличающихся от дистилляторов для получения
дистиллированной воды тем, что в них на пути пара от камеры испарения до конденсатора
встроены брызгоуловители. Пирогенные вещества не
летучи и не перегоняются с водяным паром, но они могут попасть в дистиллят с
капельками не перегнанной воды при бурном образовании пара – с целью
улавливания которых и встроены брызгоуловители.
Воду для инъекций получают в асептических условиях в стерильные сборники, она
должна быть свежеперегнанной, срок ее хранения после перегонки и стерилизации –
не более 24 часов.
Полная
прозрачность инъекционных растворов достигается правильно проведенной фильтрацией.
Для малых количеств растворов применяется фильтрация через бумажный складчатый
фильтр (используются лучшие сорта фильтровальной бумаги) с подложенным комочком
длинноволокнистой ваты. Первые порции фильтрата, в которых могут быть
взвешенные частички, возвращаются на фильтр. Отсутствие механических включений
проверяют визуально после розлива инъекционных растворов во флаконы и их
стерилизации.
Оформляют
к отпуску согласно требованиям приказа МЗ РФ №120 от 05.09.97г. Срок годности
инъекционных растворов укупоренных «под обкатку» – от 7 до 30 дней; «под
обвязку» – 2 дня. Оценку качества до стерилизации проводят
подвергая полному химическому контролю; после стерилизации – определяют рН,
подлинность, качество укупорки и проводят количественный анализ.
ЛП, употребляемые для приготовления инъекционных
растворов, хранят в отдельном шкафу в небольших штангласах,
при наполнении которых новыми порциями препарата, банка, пробка и колпачок должны каждый раз
подвергаться тщательному мытью и стерилизации.
Для предотвращения ошибок категорически запрещается
одновременное приготовление нескольких инъекционных растворов, содержащих
различные ингредиенты или одинаковые ингредиенты, но в различных концентрациях.
На рабочем месте при изготовлении инъекционных растворов не должно находиться
никаких штангласов с ЛП, не имеющим
отношения к приготавливаемому лекарству.
Recipe: Sol. Calcii chloridi 10% 50,0
Sterilisetur!
Da. Signa: внутривенная инъекция
Для приготовления инъекционного раствора необходима
простерилизованная посуда. Отмеривают 10 мл 50% раствора (1:2) кальция хлорида
или отвешивают 5,0 сухого кальция хлорида, смывают в мерную колбу и прибавляют
небольшое количество воды для инъекций, доводя затем объем раствора до метки.
Приготовленный раствор фильтруют в отпускной стерильный флакон, закрывают его
часовым стеклом, осматривают на отсутствие механических примесей. После
укупорки пробку склянки плотно обвязывают влажным пергаментом, надписывают на
обвязке состав и концентрацию раствора, ставят личную печать и стерилизуют при
1200 8 мин.
Recipe: Sol. Novocaini 0,5% 50,0
Sterilisetur!
Da. Signa: по 1 мл внутримышечно.
врд и всд новокаина – 0,1 дозы не завышены
По ГФ для стабилизации растворов новокаина 0,5% 1000мл
необходимо 4мл 0,1н раствора хлористоводородной кислоты, следовательно, на 50мл
– 0,2мл кислоты. В асептических условиях в стерильной подставке растворяют
0,25новокаина в свежеперегнанной воде для инъекций, прибавляют 0,2мл 0,1н
раствора соляной кислоты. Раствор фильтруют в стерильный флакон, укупоривают
стерильной резиновой пробкой под обкатку, стерилизуют при 1200 8мин.
Recipe: Sol. acidi ascorbinici 5% 50,0
Sterilisetur!
Da. Signa: по 2 мл внутримышечно
ППК Лицевая сторона дата
№ рецепта Aquae pro injectionibus ad 50ml Acidi ascorbinici 2,5 Natrii hydrocarbonatis 1,2 Natrii sulfitis anhydrici 0,1 Vоб – 50мл |
Состав раствора по ГФ Воды для инъекций до 1л Кислоты аскорбиновой 50,0 Натрия гидрокарбоната 23,85 Натрия сульфита безводного 2,0 |
Растворы аскорбиновой кислоты, вследствие кислой
реакции очень болезненны. Поэтому в их состав вводят натрия гидрокарбонат. В
асептических условиях в мерной колбе примерно в 35мл свежеперегнанной воды для
инъекций растворяют кислоту аскорбиновую, натрия гидрокарбонат и натрия сульфит
безводный. Затем доводят объем раствора до 50мл, фильтруют, укупоривают,
проверяют на отсутствие механических примесей и стерилизуют при 1200 8мин.
Recipe: Sol. Glucosi 25% 200,0
Sterilisetur!
Da. Signa: внутривенная инъекция
Для стабилизации растворов глюкозы используется
заранее приготовленный стабилизатор Вейбеля, которого
прибавляют к инъекционному раствору в количестве 5% независимо от концентрации
раствора. При приготовлении данного раствора необходимо учитывать, что глюкоза
содержит кристаллизационную воду в связи с чем, глюкозы следует брать в большем
количестве, рассчитав ее массу по следующей формуле:
Х =(a×100)/100
– b, где
a – прописанное в рецепте количество препарата
b – содержание влаги в
глюкозе, имеющейся в аптеке
Анализ на влажность показал, что
влажность составляет 9,6%, а значит, глюкозы следует взять 55,3 (Х=(50×100)/100 – 9,6=55,3). КУО
глюкозы – 0,64
Воды для инъекций, с учетом КУО, следует брать
154,6мл (200 – 10 – (55,3×0,64)).
ППК
Лицевая сторона
дата №
рецепта
Aquae pro injectionibus 154,6 ml
Sol. Vejbeli 10 ml
Glucosi 55,3 (сорта «Для инъекций»)
Vоб – 200 мл